%40تخفیف

بررسي بیماری¬زایی و تنوع ژنتیکی برخي جدایه های ايراني Fusrium oxysporum f. sp. lentis و تعيين ارقام مقاوم عدس

تعداد175 صفحه در فایل word

عدس با نام علمي ((Lens culinaris گياهي علفي و يكساله از تيره Fabaceae است كه ارتفاع آن از 15 تا 75 سانتيمترمتغير  است و دارای تعداد زیادی انشعابات  بالارونده می باشد. قارچ Fusarium oxysporum f. sp. lentis مهمترين بيمارگر عدس است و در حال حاضر بيماری پژمردگی فوزاريومی از اکثر مراکز کشت عدس، گزارش شده است. گياهان هم در مراحل گياهچه بودن و هم بعد از آن به اين بيماري آلوده مي شوند. بيماري پژمردگي فوزاريومي در سال هاي اخير به شدت در كشور بويژه در منطقه مغان كه يكي از مهمترين و بزرگترين مناطق كشت عدس مي باشد، ظاهر شده و باعث افت محصول و سطح زيركشت آن گرديده است.در اين مطالعه ابتدا عامل بيماري از گياهان آلوده عدس جمع آوري شده از مناطق مختلف كشور جداسازي و شناسايي شدند سپس 45 جدايه از نواحي مختلف ايران همراه با 2 جدايه كه از ايكاردا تهيه شده بود با استفاده از كليد نلسون شناسايي و در شرايط گلخانه از نظر بيماريزايي روي رقم حساس محلي بررسي شدند و مشخص شد که جدایه ها از نظر بیماری زایی اختلاف معنی داری از خود نشان می دهند. از بين مجموعه 47 جدايه مورد بررسي 29/38% جدایه ها قدرت بیماریزایی ضعیف، 04/34% بیماریزایی شدید و بالاخره 65/27% جدایه ها بیماریزایی متوسطی از خود نشان دادند. بعد از انجام آزمون بيماريزايي، بيماريزاترين جدايه هاي استان هاي آذربايجان شرقيFol30))، اردبيل  (Fol3) و خراسان(Fol45) انتخاب و در ارزيابي واكنش با 55 لاين پيشرفته تحت شرايط گلخانه و مزرعه اي  به كار برده شدند. در اين  شرايط مواد آزمايشي با روش غوطه ور سازي ريشه بريده در سوسپانسيون اسپور مايه زني شدند. در شرايط مزرعه نيز كشت در خاك آلوده طبيعي كه آلودگي آن با عامل بيماري قبلاً به اثبات رسيده بود، انجام شد. ارزيابي عكس العمل گياه در هر دو شرايط بر مبناي درصد گياهان مرده بود. تجزيه كلاستر واكنش لاين ها در مقابل Fusarium oxysporum f. sp. lentis در شرايط گلخانه اي و مزرعه اي نشان داد كه سه لاين 81S15، FLIP2007-42L و FLIP2009-18L در هر دو شرايط گلخانه اي و مزرعه اي مقاومت بسيار خوبي از خود نشان دادند تنوع ژنتيكي 47 جدايه Fusarium oxysporum f. sp. lentis، با استفاده از نشانگر مولكولي ISSR مورد برررسي قرار گرفت كه از مجموع الگوهاي باندي شش آغازگر،70 لوكوس حاصل شد كه نه لوكوس مونومورف بوده و 61 لوکوس پلی مورفیک شناخته شدند (83% چندشكلي). دندروگرام حاصل از تجزيه و تحليل خوشه ای مجموع باندهاي حاصل از شش آغازگر كه بر اساس ضريب جاكارد به دست آمد، در سطح تشابه 74 درصد جدايه ها را به شش گروه تقسيم نمود. نشانگر مولكولي ISSR تا حدي توانست جدايه ها را بر اساس منشا جغرافيايي جدا كند. ميزان چندشكلي به دست آمده (83%) بيانگر مناسب بودن استفاده از نشانگر ISSR در تعيين تنوع ژنتيكي Fusarium oxysporum f. sp. lentis مي باشد. همچنين از مجموع الگوهاي باندي مربوط به هفت آغازگر RAPD 135 لوكوس حاصل شد كه  هفت لوكوس مونومورف و 128 لوكوس پلي مورف بودند (94%) چندشكلي نشان دادند. نتايج تجزيه و تحليل خوشه اي بر اساس روش UPGMA و ضريب تشابه جاكارد، در سطح تشابه 64 درصد جدايه ها را به   10گروه تقسيم كرد. نتايج اين تحقيق سطح بالايي از تنوع ژنتيكي بين جدايه هاي اين قارچ را نشان داد که  بيانگر مناسب بودن نشانگر RAPD-PCR براي بررسي ساختار ژنتيكي جمعيت هاي Fusarium   oxysporum f. sp. lentis است. ميزان همبستگي بين ماتريس هاي تشابه حاصل از داده هاي  RAPD و   ISSR  با يكديگر و به طور مجزا با استفاده از آزمون مانتل تعيين گرديد كه در همه حالات همبستگي مثبت و معني دار بود. نكويي برازش خوشه بندي با ماتريس تشابه) ضريب كوفنتيك (نيز مشخص شد . نتايج نشان مي دهد كه دندروگرام هاي حاصل از دو  نشانگر با يكديگر تطابق داشته و برازش )90 (r ≥در سطح بسيار خوبي قرار گرفت.

كلمات كليدي: ايران، عدس، پژمردگي فوزاريومي، لاين هاي مقاوم، تنوع ژنتيكي، Fusarium oxysporum f. sp. lentis ، Lens culinaris

«فهرست مطالب»

فصل 1…………………………………..    مقدمه

1-1………………………………… مقدمه 1

1-2…………. انواع عدس و موارد استفاده از آن 4

1-3…………………… خاصیت های داروئی عدس 4

فصل 2………………………………   بررسي منابع

2-1………… تاريخچه و اهميت بيماري پژمردگي عدس 7

2-2…………………. تاکسونومی  جنس Fusarium 8

2-3………………….. نامگذاری فرمهای مخصوص 10

2-4………………………. نژادهای بیماریزا 11

2-5………………………… سيكل زندگي قارچ 12

2-6…………… توسعة بيماري پژمردگي فوزاريومي 12

2-7………. مقاومت به F. oxysporum در گياهان عالي 13

2-8………….. كنترل بيماري پ‍ژمردگي فوزاريومي 14

2-9……………… فیلوژنی گونه های F. oxysporum 14

2-10عناصرقابل انتقال در Fusarium oxysporum 17

2-11تولید مثل جنسی در Fusarium oxysporum 18

2-12دامنه میزبانی و فرآیند آلودگی  Fusarium oxysporum 20

2-13انتخاب مارکرهای مولکولی 23

2- 14اهمیت مطالعه تنوع ژنتیکی 25

2- 15نشانگر مولکولی RAPD 26

2-16نشانگر ISSR 27

فصل 3 مواد و روشها

3-1 جمع آوري نمونه ها از گياهان ميزبان………………………………………………………………………………30

3-2……………….. محيط كشتهاي مورد استفاده 32

3-2-1محيط كشتهاي جداسازي……. 32

3-2-2 محيط كشتهاي خالص سازي 33

3-2-3 محيط كشت هاي استفاده شده براي شناسايي 33

3-3…………………… جداسازي قارچ از گياه 34

3-4………………………… خالص سازي قارچ 35

3-5………….. تشخيص و شناسايي قارچ F.oxysporum 35

3-6………………………. آزمون بيماريزايي 36

3-6-1 تهيه مايه تلقيح 36

3-6-2 آماده سازي گياهچه هاي عدس براي مايه زني 37

3-6-3 تهيه سوسپانسيون اسپور 37

3-6-4 مايه زني گياهچه هاي عدس با F. oxysporum 37

3-6-5 ارزيابي شدت بيماريزايي جدايه هاي  F. oxysporum 38

3-7 ارزيابي گلخانه اي ژنوتيپ هاي عدس نسبت به قارچ F. oxysporum f.sp. lentis 38

3-8 ارزيابي مزرعه اي ژنوتيپ هاي عدس نسبت به قارچ F. oxysporum f.sp. lentis 40

3-8-1 مشخصات جغرافيايي و اقليمي  محل اجراي آزمايش 42

3-9……………. مواد و روش های بررسی مولکولی 42

3-9-1 تهیه میسلیوم 42

3-9-2 استخراج DNA ژنومی 43

3-9-3 ارزیابی DNA استخراج شده 45

3-9-4 آماده‌سازی مخلوط PCR 46

3-9-5 برنامه حرارتی واکنش های PCR 47

3-10 بررسی تنوع ژنتیکی با استفاده از نشانگر مولکولی ISSR 48

3-10-1 برنامه حرارتی واکنش های PCR در نشانگر مولکولی ISSR 49

3-11بررسی تنوع ژنتیکی با استفاده از نشانگر مولکولی RAPD 49

3-11-1 برنامه حرارتی واکنش های PCR در نشانگر مولکولی RAPD 50

3-11-2 مشاهده محصولات واکنشهای PCR 50

3-12تجزیه و تحلیل داده ها 52

فصل 4……………………………………… نتايج

4-1……………….. جدا سازي قارچ از بافت آلوده 54

4-2 آزمون بيماريزايي جدايه هاي F. oxysporum f. sp. lentisدر گلخانه 57

4-2-1 علايم بيماري 57

4-3……….. درجه بندي شدت بيماريزايي جدايه ها 58

4-4 تجزيه واريانس و مقايسه بيماريزايي جدايه هاي F. oxysporum. f. sp. lentis 59

4-5 ارزيابي ژنوتيپ هاي عدس نسبت به جدايه هاي  Fusarium oxysporum f.sp. lentis در شرايط گلخانه………………………………………………………………………………………………………………..62

            4-5-1 میزان حساسیت لاین های عدس به جدایه اردبيل در شرايط گلخانه………………………65

            4-5-2  میزان حساسیت لاین های عدس به جدایه  آذربايجان شرقي در شرايط گلخانه…65

           4-5-3 میزان حساسیت لاین های عدس به جدایه خراسان در شرايط گلخانه……………………..66

4-6………………………. آزمون مزرعه اي 72

4-7……………………. بررسی تنوع ژنتیکی 78

4-7-1 استخراج DNA ژنومی 78

4-7-2 بررسی تنوع ژنتیکی جدایه های قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از نشانگر مولکولی ISSR 78

               4-7-2-1 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر (GAC)5……..79

               4-7-2-2 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر (CAG)5……..81

               4-7-2-3 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر PCMS…………83

               4-7-2-4 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر (GTG)5……..85

              4-7-2-5 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر ISSR10……….87

              4-7-2-6 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر ISSR2………….89

4-8 محتواي اطلاعات چند شكلي (PIC) و شاخص نشانگري MI 91

4-9 بررسی تنوع ژنتیکی 47 جدايه Fol  با استفاده از نشانگر مولکولی RAPD 93

4-9-1 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر تصادفی 230 94

4-9-2 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر تصادفی 238 95

4-9-3 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر تصادفی 238 97

4-9-4 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر تصادفی OPA02 99

4-9-5 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر تصادفی OPA04 101

4-9-6 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر تصادفی OPA13 103

4-9-7 گروه های انگشت نگاری شناسایی شده با استفاده از آغازگر تصادفی RC09 105

4-10محتواي اطلاعات چند شكلي (PIC) و شاخص نشانگري MI 108

4-11مقايسه دو ماركر  RAPD و  ISSR 110

4-12مقايسه ماتريس هاي تشابه و آزمون مانتل………………………………………………………………….110

فصل 5……………………………………….. بحث

5-1 بيماريزايي جدايه هاي Fusarium oxysporum f. sp. lentis 113

5-2 درجه بندي بر همكنش ميزبان- بيمارگر در ارقام نخود در برابر جدايه هاي  Fusarium oxysporum f. sp. lentis در شرايط گلخانه و مزرعه. ..116

5-3………………………….. ماركر ISSR 119

5-4…………………………. ماركر RAPD 120

5-5……… ميزان همبستگي ماركر ISSR  و RAPD 122

        5-6 جمع بندي نتايج اين تحقيق………………………………………………………………………………………….124

       5-7 پيشنهادات………………………………………………………………………………………………………………………. 124

فصل 6    منابع

 

 

 

 

 

«فهرست جدول ها»

جدول1-1 ميزان توليد حبوبات در سطح كشور به تفكيك استان ………………………………………………………….2

جدول 3-1 جدايه هاي قارچ Fusarium oxysporum  f. sp. lentis و  محل جمع آوري آنها…………………….. 31

جدول3-2 سيستم 1 تا 9 درجه بندی بايا براي ارزيابي مقاومت عدس نسبت به قارچF. oxysporum f. ….……….….………….……………………………………………………………………….sp. lentis38

جدول3-3 لاين هاي مورد استفاده در آزمايش هاي گلخانه و مزرعه اي…………………………………………… 39

جدول 3-4 مواد لازم برای تهیه بافر1 …….……………………………………………….…….CTAB 43

جدول 3-5  مقادیر حجمی مواد مورد استفاده برای انجام یک واکنش ……………………………PCR 46

جدول 3-6 مشخصات آغازگرهای مورد استفاده در نشانگر مولکولی ……………………………ISSR 48

جدول3-7 مشخصات آغازگر‌های مورد استفاده در نشانگر مولکولی ……….…………………..RAPD 49

جدول 4-1 تجزيه واريانس داده هاي حاصل از بيماريزايي جدايه هاي………………………………………………. 59

جدول4-2مقايسه ميانگين زردي و پژمردگي عدس ناشي از Fusarium oxysporum f. sp. lentis………… 60

جدول 4-3 مقايسه ميانگين بيماريزايي جدايه هاي Fol در شرايط گلخانه با استفاده از آزمون دانكن…. 61

جدول 4-4 ميانگين درصد گياهان مرده و عكس العمل لاين هاي عدس دربرابر فوزاريوم در شرايط گلخانه در اثر تيمار با سه جدايه منتخب از استانهاي اردبيل، آذربايجان شرقي و خراسان………………………………63

جدول 4-5 تجزيه واريانس داده هاي حاصل از بررسي مقاومت ارقام به جدايه ها ………………………………66

جدول 4-6 نتايج مقايسه ميانگين داده هاي گلخانه اي با استفاده از آزمون چند دامنه اي دانكن در برابر سه جدايه Fol………………………………………………………………………………………………………………………………. 68

جدول 4-7 ميانگين درصد گياهان مرده و عكس العمل لاين هاي عدس دربرابر فوزاريوم در شرايط مزرعه…………………………………………………………………………………………………………………………………………… 74

جدول4-8 خلاصه نتايج بدست آمده براي آغازگرهاي استفاده شده در …………………………..ISSR 90

جدول 4-9محتوي اطلاعات چند شكلي ((PIC، نسبت چند گانه موثر (EMR)  و شاخص نشانگري حاصل  از شانگرهاي ISSR در بررسي تنوع ژنتيكي 47 جدايه …………….…………….…………………FOL 91

جدول4-10 خلاصه نتايج بدست آمده براي آغازگرهاي استفاده شده در ………………….…… RAPD107

جدول 4-11 محتوي اطلاعات چند شكلي ((PIC، نسبت چند گانه موثر(EMR)  و شاخص نشانگري حاصل از نشانگرهاي RAPD در بررسي تنوع ژنتيكي 47 جدايه FOL………………………………………………………….108

جدول 4- 12محتوي اطلاعات چند شكلي ((PIC، نسبت چند گانه موثر (EMR) و شاخص نشانگري حاصل از  دو نشانگر RAPD و ISSR در بررسي تنوع ژنتيكي 47 جدايه FOL ………………………………………………110

جدول 4-13 نتايج آزمون مانتل براي دو نشانگر  ISSR و  ………………………………………. RAPD113

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

«فهرست شكل ها»

شكل1-1 گياه عدس و قسمتهاي مختلف آن ……………………………………………………………………………………….3

شکل2-1 علايم بيماري فوزاريومي عدس در مزارع اردبیل  با پژمردگي  لکه اي واضح………………………….. 8

شکل 2-2 اصول توالی های تکراری ISSR یا SSR-PCR …………………………………………………………………..28

شکل3- 1 مراحل جداسازي قارچ از بافت آلوده گیاه میزبان……………………………………………………………… 30

شكل3 -2 مراحل اجراي آزمايشهاي مزرعه اي………………………………………………………………………………….41

شکل3-3 دستگاه سانتریفیوژ یخچال‌دار (Beckman, 64R)…………………………………………………………….. 45

شکل 3-4 دستگاه اسپکتروفتومتر (Eppendorf, biophotometer) ……………………………………………………46

شکل 3-5 دستگاه ترموسایکلر ……………………………..(Eppendorf, mastercycler, epgradient) 48

شکل 3-6 دستگاه عکسبرداری (GelDoc, Vilber Lourmat, T-5 x 20-2A)………………………………………. 51

شکل 3-7  دستگاه الکتروفورز………………………………………………………………………………………………………. 51

شكل4-1  پرگنه هاي .…………….………..……………………………….. F. oxysporum f.sp. lentis 55

شکل 4-2 شکل ظاهری ماکرو کنيديهاي قارچ ……………….…………… F. oxysporum f. sp. lentis 56

شکل4-3 شکل ظاهری تشکيل ميکروکنيدي روي سرهاي  دروغين  F. oxysporum f. sp. lentis……….. 56

شکل 4-4 شکل ظاهری كلاميدوسپور در قارچ …………………….……… F. oxysporum f. sp. lentis 56

شكل 4-5 علائم بيماري در گياهان مايه زني شده با جدايه  FOL در مراحل مختلف رشد گياه…………… 58

شكل 4-6 دندروگرام لاين هاي پيشرفته عدس بر مبناي ميانگين درصد گياهان مرده در اثر آلودگي به سه جدايه مذكور Fusarim oxysporum f.sp. lentis در شرايط گلخانه……………………………………………………….. 71

شكل 4- 7 دندروگرام لاين هاي پيشرفته عدس بر مبناي ميانگين درصد گياهان مرده در اثر آلودگي به بيماري پژمردگي فوزاريومي در شرايط مزرعه …………………………………………………………………………………..75

شكل 4-8 نمودار درصد مرگ و مير55 لاين استفاده شده در شرايط مزرعه ………………………………………77

شکل 4- 9 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر منفرد (GAC)5 در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی…………………………………. 80

شکل 4-10 دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد (GAC)5 و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد…………………………………………….81

شکل 4- 11 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر منفرد (CAG)5 در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی………………………………82

شکل 4-12 دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد (CAG)5 و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد………………………………………….. 83

شکل 4- 13 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر منفرد PCMS در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی………………………………… 84

شکل 4-14 دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد PCMS و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد……………………………………………. 85

شکل 4- 15 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر منفرد (GTG)5  در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی…………………………….. 86

شکل 4-16 دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد  (GTG)5  و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد………………………………………… 87

شکل 4- 17 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر  ISSR10در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی………………………………………… 88

شکل 4-18 دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد  ISSR10  و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد………………………………………… 87

شکل 4- 19 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر  ISSR2در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی………………………………………… 89

شکل 4-20 دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد  ISSR2 و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد………………………………………………90

شكل 4-21 دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از كل آغازگرهاي ISSR بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد……………………………………………….. 92

شكل 4-22 دندروگرام ترسيم شده بر اساس روش UPGMA و ضريب تشابه جاكارد براي 47 جدايه Fol حاصل از تلفيق داده هاي الگوبندي ISSR  و پلات سه بعدي حاصل از تجزيه مختصات اصلي به روش ماتريس تشابه جاكارد……………………………………………………………………………………………………………………. 93

شكل 4-23 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر منفرد 230 در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی………………………………….94

شكل 4-24  دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد 230 و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد………………………………………………….95

شكل 4-25 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر منفرد 238 در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی………………………………….96

شكل 4-26  دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد 238 و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد……………………………………………….. 97

شكل 4-27 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر منفرد 241 در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی………………………………… 98

شكل 4-28  دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد 241 و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد………………………………………………… 99

شكل 4-29 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر منفرد OPA02 در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی………………………………… 100

شكل 4-30  دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد OPA02 و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد…………………………………………… 101

شكل 4-31 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر منفرد OPA04 در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی…………………………………102

شكل 4-32  دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد OPA04 و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد………………………………………….. 103

شكل 4-33 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر منفرد  OPA13 در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی……………………………..104

شكل 4-34  دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد 238 و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد………………………………………………. 105

شكل 4-35 الگوی باندی حاصل از انگشت نگاری DNA با استفاده از آغازگر منفرد RC09 در 47 جدایه از قارچ F. oxysporum f. sp. lentis M: نشانگر اندازه DNA 1kb و NC: شاهد منفی…………………………………106

شكل 4-36  دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از آغازگر منفرد  RC09و بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد…………………………………………….. 107

شكل4-37 دندروگرام مربوط به تنوع ژنتیکی 47 جدایه از قارچ  F. oxysporum f. sp. lentis با استفاده از كل آغازگرهاي RAPD بر اساس روش UPGMA و ضریب تشابه جاکارد……………………………………………..109

شكل4 -38 دندروگرام ترسيم شده بر اساس روش UPGMA و ضريب تشابه جاكارد براي 47 جدايه Fusarium oxysporum f. sp. lentis  حاصل از تلفيق داده هاي الگوبندي RAPD و پلات سه بعدي حاصل از تجزيه مختصات اصلي به روش ماتريس تشابه جاكارد……………………………………………………………………… 109

 

قبلا حساب کاربری ایجاد کرده اید؟
گذرواژه خود را فراموش کرده اید؟
Loading...
enemad-logo